
一、细胞处理
1 、设置实验组和对照组,每组至少6 个重复+1 个非标记对照。
2 、培养皿用 15 mL 普通培养基铺板 70% -90% confluence(细胞生长汇合度)。 注意:每次吸取细胞的培养液都要混匀。
3、培养皿置于培养箱中,手指放置孔板面上,快速横向摇动 3 下,纵向摇动 3 下,之后不再移动孔板。目的是让细胞均匀生长。注意:摇匀后不再动孔板,孔 板不要叠着放。
二、更换培养基
1、在细胞处于对数生长期时(贴壁细胞约 5×10⁶ ~ 2×10⁷ 个;悬浮细胞约1×10⁵ ~ 1×10⁶ 个 /mL)更换同位素标记的培养基,从培养箱中取出所有培养皿,真空抽吸器吸弃培养液(注意:此处勿用移液 管移液,以防不能彻底去除原有培养液),分别用 7 mL 37℃的 PBS 润洗三次细胞后(注意:洗液体积要大于培基体积以便清洗培养皿的内壁)。
2、每个培养皿 加 8mL 配好的同位素培养基。注意:在培养皿上记录确切换液时间,此步操作 速度尽量快,培养标记时间根据研究的代谢途径确定。
注意:
1. 需保证最后过滤好的培养基是无菌的,以防止培养细胞污染;
2. 一般在life/Invitrogen/Gibco 可以买到无Glucose的DMEM培养基,也可以用无Glutamine 的DMEM或者1640培养基来做标记Glucose或标记Glutamine的实验。
3. 同位素标记培养基中Glucose浓度应与原培养基中Glucose浓度一致。例如,哺乳动物细胞培养基的浓度约1 g/L。
三、标记时间
标记时长是指换上标记培养基后的时间,去除普通培养基后换上标记培养基开始记录,为标记 0h 样本,如果需要收集标记 12h 的样品,就是指换上标记培养基后的第 12h 收集样品,以此类推,如果需要收集标记 24h 的样品,就是指换上标记培养基后的第 24h 收集样品。
(通常情况下,需要查阅相关研究文献,参考文献研究设计,结合自身研究情况
和实验目的设计培养时间点。)
研究通路 | 标记底物 | 平衡时间 | 细胞量 |
糖酵解(EMP) | 13C-Glucose 100% | 肿瘤细胞1h/2h 原代细胞12h | 原代细胞≥10^7 肿瘤细胞≥2×10^6 |
三羧酸循环(TCA) | 6h/12h | ||
磷酸戊糖途(PPP) | 0.5h/1h |
四、细胞收集(建议细胞数≥10^7 ,肿瘤细胞≥2×10^6)
收集细胞前,在显微镜下观察细胞是否有污染,如果细胞正常,对细胞进行计数。
3.1 贴壁细胞:
1)从培养箱中取出所有培养皿,真空抽吸器吸弃培养液。
2)缓慢倒约 10 mL 37℃生理盐水至每个培养皿,盖上盖子,画圈摇晃 2-3 下, 用抽吸器抽吸生理盐水;再用 10mL生理盐水重复上述步骤复洗一次,用抽吸器完全抽吸掉生理盐水。
3)各皿细胞加入 1mL 的80%甲醇溶液(-20 度预冷),细胞刮刀刮取全部细胞,转移到干净 safe-lock 离心管,用封口膜封严,-80 度冰箱保存,干冰运输。
3.2 悬浮细胞:
1)从培养箱中取出所有培养皿,200g 离心收集细胞,弃去上清;
2)37°C 预热无菌生理盐水(1mL)重悬细胞,200g 离心;
3)再次37°C无菌生理盐水重悬细胞,混匀后转移至1.5mL safe-lock 离心管,200g 离心,弃去上清;
4)各管加入 500 微升的 80%甲醇溶液(-20 度预冷),用封口膜封严,-80 度冰箱保存,干冰运输。
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